GreenMasterMix FAST ohne ROX für die qPCR

realtime PCR master mix without ROX from Genaxxon


Artikel-Nr.: M3150.1000

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GreenMasterMix FAST ohne ROX für die realtime PCR in allen gängigen Blocksystemen. Dieser... mehr
Produktinformationen "GreenMasterMix FAST ohne ROX für die qPCR"

GreenMasterMix FAST ohne ROX für die realtime PCR in allen gängigen Blocksystemen. Dieser Mastermix ist auf eine schnelle PCR mit kurzen Denaturierungszeiten und 2-Schritt PCR Protokollen ausgelegt. Unser GreenMasterMix ohne ROX enthält einen interkalierenden Fluoreszenzfarbstoff und alle notwendigen Komponenten in einer optimierten Menge, um eine quantitative PCR durchzuführen.

Vorteile der im Genaxxon GreenMasterMix eingesetzten HotStart Taq-Polymerase:

  • Hotstarttechnologie für das Setup bei Raumtemperatur.
  • kurze anfängliche Denaturierungszeit von maximal 2 Minuten
  • optimiert auf 2-step PCR Protokolle
  • Kein Pipettieren auf Eis notwendig
  • Kein sofortiges Weiterbearbeiten (PCR) notwendig. Die pipettierten PCR-Ansätze können bis zu 3 Tagen bei RT stehengelassen werden.
  • Amplifikation auch von GC-reichen Templates
  • Hohe Ausbeute
  • Keine Primerdimerbildung

Die Genaxxon Hotstart Taq DNA-Polymerase bietet Komfort und Praktikabilität für konstante Effizienz und Spezifität:
1. Sie inhibiert die Polymerase bei niedrigen Temperaturen und verhindert so zuverlässig unspezifische PCR-Reaktionen. Daher muss das PCR Setup nicht auf Eis durchgeführt werden.
2. Dies führt dazu, dass der PCR-Ansatz bei RT (20°C bis 25°C) zusammengemischt und bis zu 3 Tage gelagert werden kann, ohne das Endergebnis zu beeinflussen (z.B. während der Mittagspause oder während des Wartens auf weitere Proben).

Der Green qPCR Mastermix ohne ROX enthält alle notwendigen Komponenten in einer optimierten Menge, um eine quantitative PCR durchzuführen.

  • Hotstart Taq DNA Polymerase
  • dATP, dCTP, dGTP, dTTP
  • interkalierender, grüner Fluoreszenzfarbstoff
  • optimierter Reaktionspuffer
  • Stabilisator und Enhancer, um sogar die Amplifikation von low copy number Targets zu ermöglichen
  • Die kleinen Aliquots von 1,25mL vereinfachen die Handhabung und die Lagerung (weniger Einfrier- und Auftauzyklen pro Aliquot).

Speziell geeignet für: BioRad CFX96 Touch™, CFX384 Touch™, CFX Connect™, DNA Engine Opticon® 2, Chromo4™, iCycler iQ™ and My iQ™ , Roche LightCycler® 480, LightCycler® 1536, LightCycler® Nano, LightCycler® 96 and QuantStudio™ instruments, Thermo Scientific™ PikoReal™, Cepheid SmartCycler®, Bio Molecular Systems Mic qPCR cycler, Qiagen Rotor Gene Q, Rotor Gene 6000, MyGo Mini and MyGo Pro.

Andere realtime PCR Mastermixe von Genaxxon sind: M3023 - GreenMastermix No ROX >, M3045 - ProbeMastermix No ROX >, M3011 - GreenMastermix Low ROX >, M3031 - ProbeMastermix Low ROX >, M3052 - GreenMastermix High ROX >, M3010 - ProbeMastermix High ROX >.

Unsere Daten zeigen, dass der Genaxxon ProbeMastermix (M3045) > sowie der analoge GreenMastermix M3023 > (= M3045 mit grünem Fluoreszenzfarbstoff) vergleichbare Ergebnisse zu entsprechenden qPCR Mastermixen von Wettbewerbern liefert.

Testmuster zum Sonderpreis erhältlich! Keine Versandkosten bei Versand innerhalb Deutschlands! Der Testmusterpreis wird bei der ersten offiziellen Bestellung des Produkts zurückerstattet.

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Unser Kommentar zu "GreenMasterMix FAST ohne ROX für die qPCR"
- FAST start system. Almost no initial denaturation needed! - High Sensitivity and Specifity - Optimised buffer system - Reproducibility over a wide range of template amounts - Broad dynamic range. - Aliquot size: 1.25mL.
Specifications: This realtime PCR master mix is a ready-to-use 2-time master mix that contains... mehr
 

Technische Daten:

Specifications:
This realtime PCR master mix is a ready-to-use 2-time master mix that contains no ROX™
Suited for FAST PCR with MIC Cycler

short initial denaturation times
optimized for 2-step qPCR
Aliquot size: 1.25mL.

Applikation:

PCR Primer extension Multiplex PCR Low-copy targets PCR Real-time PCR Quantitative PCR

Einheitendefinition:

One unit is defined as the amount of enzyme which will convert 10 nmoles of dNTPs to an acid-insoluble form in 30 min at 72°C under the assay conditions (25 mM TAPS (tris-(hydroxymethyl)-methyl-amino-propanesulfonic acid, sodium salt) pH 9.3 (25°C); 50 mM KCl; 2 mM MgCl2; 1 mM b-mercaptoethanol; and activated calf thymus DNA as substrate.

Sicherheits Hinweise / Safety

Klassifizierungen / Classification

eclass-Nr: 34-16-04-90
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Hier finden Sie Informationen und weiterführende Literatur zu GreenMasterMix FAST ohne ROX für die qPCR. Für weitere Dokumente (Zertifikate mit weiteren Lotnummern, Sicherheitsdatenblätter in anderer Sprache, weitere Produktinformationen) wenden Sie sich bitte an Genaxxon biosience unter: info@genaxxon.com oder Tel.: +49 731 3608 123.

 
 
 
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Fast PCR:

When performing fast real-time PCR, it is of high importance to consider primer design and target size. For efficient amplification during fast cycling conditions, target size between 70 bp and 200 bp is recommended. The shorter the target length,  the faster the total run time. For other targets and other primer sets, the annealing step has to be determined experimentally.

Please use the following protocol for inspiration as you need to optimize instruments settings according to yourr target size and applied instruments.

Fast real-time PCR results using Genaxxon Master Mixes (without ROX) on LightCycler® 96

GreenMasterMix (2X) without ROX or ProbeMasterMix (2X) without ROX was tested on LighCycler96 (Roche) using fast cycling real-time 2-step protocols; Fast PAH12 Green LC and Fast Pthr Probe LC, respectively.
qPCR Setup: GreenMasterMix (2X) (without ROX) or ProbeMasterMix (2X) (without ROX), primers targeting either PAH12 (203 bp) or Pthr (75 bp) and 4 concentrations of gDNA (40 ng, 20 ng, 10 ng and 5 ng) were used. All DNA concentrations were tested in quadruple replicates. See fig. 1 and 2. The PCR reaction mix was run on LightCycler® 96 (No requirements for ROX). Instrument settings, run times and quality criteria for the applied fast protocols; Fast PAH12 Green LC and Fast Pthr Probe LC, were compared to the standard protocol; Standard Pthr LC. See table 1.

Results: The standard Fast Pthr Probe LC protocol has a run time of 80.8 minutes. Fast PAH12 Green LC and Fast Pthr Probe LC protocols, resulted in run times of 47.5 and 40.8 minutes, respectively. All protocol times are inclusive ramping time and a15 minutes hot start. The determined criteria, as shown in table 1, for Fast PAH12 Green LC and Fast Pthr Probe LC protocols were satisfying. Furthermore, the melt curve analysis using Green 2x Master Mix without ROX the Fast PAH12 Green LC protocol confirmed high specificity.

 
 
 
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Referenzen..

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Quelle/Source: NCBI PubMed >

Keratinocyte-derived IκBζ drives psoriasis and associated systemic inflammation
Sebastian Lorscheid, Anne Müller, Jessica Löffler, Claudia Resch, Philip Bucher, Florian C. Kurschus, Ari Waisman, Knut Schäkel, Stephan Hailfinger, Klaus Schulze-Osthoff, Daniela Kramer
JCI Insight. 2019 Nov 14; 4(22): e130835. Published online 2019 Nov 14. doi: 10.1172/jci.insight.130835
PMCID: PMC6948851

Long Noncoding RNA SSR42 Controls Staphylococcus aureus Alpha-Toxin Transcription in Response to Environmental Stimuli
Jessica Horn, Maximilian Klepsch, Michelle Manger, Christiane Wolz, Thomas Rudel, Martin Fraunholz
J Bacteriol. 2018 Nov 15; 200(22): e00252-18. Prepublished online 2018 Aug 27. Published online 2018 Oct 23. doi: 10.1128/JB.00252-18
PMCID: PMC6199474

MiR-744-5p inducing cell death by directly targeting HNRNPC and NFIX in ovarian cancer cells
Michael Kleemann, Helga Schneider, Kristian Unger, Philip Sander, E. Marion Schneider, Pamela Fischer-Posovszky, René Handrick, Kerstin Otte
Sci Rep. 2018; 8: 9020. Published online 2018 Jun 13. doi: 10.1038/s41598-018-27438-6
PMCID: PMC5998049

miR-217-5p induces apoptosis by directly targeting PRKCI, BAG3, ITGAV and MAPK1 in colorectal cancer cells
Marion Flum, Michael Kleemann, Helga Schneider, Benjamin Weis, Simon Fischer, René Handrick, Kerstin Otte
J Cell Commun Signal. 2018 Jun; 12(2): 451–466. Published online 2017 Sep 14. doi: 10.1007/s12079-017-0410-x
PMCID: PMC5910322