dNTP-Set (Na-Salz) - 100 mM Lösung

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Stoffmenge

4 x 20 µmol

4 x 25 µmol

4 x 100 µmol

4 x 125 µmol

4 x 500 µmol

Produktnummer: M3015.4125
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Produktinformationen "dNTP-Set (Na-Salz) - 100 mM Lösung"

Hochreine, HPLC-gereinigte dNTPs (>99%) als 4 separate Lösungen (dATP, dCTP, dGTP und dTTP) zu jeweils 100 mM für die qPCR, Standard PCR, RT-PCR und Klenowreaktionen. Die dNTP-Lösungen sind optimiert für die Verwendung in der DNA-Polymerisation und anderen verwandten Methoden. Die dNTPs von Genaxxon enthalten keine messbare bakterielle oder humane DNA. Für die Lagerung über einen längeren Zeitraum und/oder bei regelmäßiger, aber nicht häufiger Anwendung empfehlen wir, kleinere Aliquots zuzubereiten.

Lösungen der Natriumsalze der Nukleotide dATP, dCTP, dGTP und dTTP
Konzentration: 100 mM je Nukleotid

Beachten Sie auch unseren PCR dNTP-Mix > mit 2 mM > oder 10 mM > Konzentration oder unsere modifizierten Nukleotide, wie z. B. Biotin-11-dUTP >.

Für Ihre erfolgreiche PCR finden Sie hier unsere Taq DNA Polymerse (M3001) >, unsere Proof-Reading Polymerasen Pfu (M3004) >, Pwo (M3002) > oder ReproFast (M3003) >, sowie unseren ready-to-use RedMastermix (M3029) >, der schon dNTPs enthält.

FAQs

dNTPs (Desoxyribonukleosid-Triphosphate) sind die Bausteine der DNA. Sowohl bei PCR als auch bei qPCR sind Qualität, Stabilität und Menge der dNTPs entscheidend. Die Reinheit der dNTPs ist besonders wichtig, wenn Sie mit geringen Ausgangsmengen an DNA-Template arbeiten.

Genaxxon bietet dNTPs in zwei verschiedenen Formen an: entweder als Set oder als Mix. Der Mix enthält alle vier dNTPs – dATP, dCTP, dGTP und dTTP – in einem einzigen Röhrchen, jeder in einer spezifischen Konzentration. Diese Mischungen sind für den sofortigen Gebrauch konzipiert und genau auf PCR- und qPCR-Aufgaben abgestimmt. Andererseits bietet das dNTP-Set einzelne Röhrchen für jedes dNTP, was Flexibilität und Kontrolle über ihre Verwendung ermöglicht.

Typischerweise beträgt die Standardkonzentration für jedes dNTP 0,2 mM (Konzentrationen von 0,2 mM bis 0,4 mM sind in der Regel ideal für Ihre PCR). Niedrigere Konzentrationen, zwischen 0,05 mM und 0,1 mM, können die PCR-Spezifität verbessern, jedoch die Ausbeute reduzieren. Umgekehrt können höhere Konzentrationen die Ausbeute steigern, jedoch auf Kosten der Spezifität. Längere PCR-Fragmente erfordern möglicherweise höhere dNTP-Konzentrationen. Eine Anpassung der dNTP-Konzentration erfordert jedoch entsprechende Anpassungen von anderen PCR-Komponenten wie Puffer und Mg2+.

Typischerweise kann die Erhöhung der Menge an dNTPs in Ihrer PCR die DNA-Ausbeute erhöhen, aber die Spezifität beeinträchtigen. Bitte beachten Sie, dass es auch erforderlich ist, andere PCR-Komponenten wie Puffer und Mg2+ anzupassen, wenn Sie die dNTP-Konzentration erhöhen.

Die PCR kann durch nicht-reine dNTP-Lösungen, die Inhibitoren beinhalten, erheblich beeinträchtigt werden. Solche Unreinheiten sind oft auf unzureichende Herstellungsprozesse zurückzuführen. Idealerweise sollten dNTPs frei von Verunreinigungen wie Ribonukleosid-Triphosphaten, modifizierten Nukleotiden, Desoxyribonukleosid-Di- und -Monophosphaten oder anderen Inhibitoren sein.

dNTPs von geringerer Qualität können modifizierte Nukleotide enthalten. Bei Verwendung einer Standard-Taq-Polymerase können dann Punktmutationen auftreten, da das Enzym zwischen verschiedenen dNTPs nicht unterscheiden kann. Die Verwendung einer Proofreading-Polymerase kann dieses Problem nur teilweise lösen, da das Vorhandensein von modifizierten Nukleotiden auch die DNA-Synthese vollständig blockieren kann.

dNTPs bleiben für mindestens 24 Monate stabil, wenn sie bei -20°C oder -70°C gelagert werden. Bei Raumtemperatur (+15°C bis +30°C) können sie bis zu einer Woche aufbewahrt werden. Um ihre Stabilität zu erhalten, sollten wiederholte Auftau- und Gefrierzyklen vermieden werden. Für eine langfristige Lagerung wird empfohlen, Aliquots zu verwenden.

Set of separate 100 mmol/L solution of each dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTP).
Sodium salt of each dNTP
Purity of each dNTP: min. 99% (HPLC)
No DNases, RNases, proteases detectable. No human or E.coli DNA detectable.

100mmol/L correspond to 100µmol per 1mL.

dATP: λmax 259nm; ε 15.4 λ mmol-1 cm-1 (Tris/HCl, pH7.0)
dCTP: λmax 271nm; ε 8.9 λ mmol-1 cm-1 (Tris/HCl, pH7.0)
dGTP: λmax 252nm; ε 13.7 λ mmol-1 cm-1 (Tris/HCl, pH7.0)
dTTP: λmax 262nm; ε 9.6 λ mmol-1 cm-1 (Tris/HCl, pH7.0)

Applikation / Application:

PCR qPCR Mulitplex PCR

Einheiten / Units:

Quelle / Source:

synthetic

Sicherheits Hinweise / Safety

Klassifizierungen / Classification

eclass-Nr: 32-16-05-02

Dokumente - Protokolle - Downloads :

Hier finden Sie Informationen und weiterführende Literatur. Für weitere Dokumente (Zertifikate mit weiteren Lotnummern, Sicherheitsdatenblätter in anderer Sprache, weitere Produktinformationen) wenden Sie sich bitte an Genaxxon biosience unter: info@genaxxon.com oder Tel.: +49 731 3608 123.

Dokumente:

Sicherheitsdatenblätter
Zertifikate
Produktbeschreibung
Allg. Daten 3

Hier finden Sie Artikel und Literaturzitate, in denen die Autoren auf die hohe Qualität dieses Genaxxonprodukts vertrauen.
Quelle: NCBI PubMed

Quelle/Source: NCBI PubMed >

Ultrasensitive THz biosensor for PCR-free cDNA detection based on frequency selective surfaces
Christian Weisenstein, Dominik Schaar, Anna Katharina Wigger, Heiko Schäfer-Eberwein, Anja K. Bosserhoff, Peter Haring Bolívar
Biomed Opt Express. 2020 Jan 1; 11(1): 448–460. Published online 2019 Dec 23. doi: 10.1364/BOE.380818
PMCID: PMC6968760

Monitoring the threatened utility of malaria rapid diagnostic tests by novel high-throughput detection of Plasmodium falciparum hrp2 and hrp3 deletions: A cross-sectional, diagnostic accuracy study
Andrea Kreidenweiss, Franziska Trauner, Miriam Rodi, Erik Koehne, Jana Held, Lea Wyndorps, Gédéon Prince Manouana, Matthew McCall, Ayola Akim Adegnika, Albert Lalremruata, Peter G. Kremsner, Rolf Fendel, Thaisa Lucas Sandri
EBioMedicine. 2019 Dec; 50: 14–22. Published online 2019 Nov 21. doi: 10.1016/j.ebiom.2019.10.048
PMCID: PMC6921222

The circadian clock is functional in eosinophils and mast cells
Anja Baumann, Simone Gönnenwein, Stephan C Bischoff, Hadas Sherman, Nava Chapnik, Oren Froy, Axel Lorentz
Immunology. 2013 Dec; 140(4): 465–474. Published online 2013 Oct 28. doi: 10.1111/imm.12157
PMCID: PMC3839650

Low Density Lipoprotein Receptor-related Protein 1 (LRP1) Modulates N-Methyl-d-aspartate (NMDA) Receptor-dependent Intracellular Signaling and NMDA-induced Regulation of Postsynaptic Protein Complexes
Chikako Nakajima, Akos Kulik, Michael Frotscher, Joachim Herz, Michael Schäfer, Hans H. Bock, Petra May
J Biol Chem. 2013 Jul 26; 288(30): 21909–21923. Published online 2013 Jun 11. doi: 10.1074/jbc.M112.444364
PMCID: PMC3724646

Reelin induces EphB activation
Elisabeth Bouché, Mario I Romero-Ortega, Mark Henkemeyer, Timothy Catchpole, Jost Leemhuis, Michael Frotscher, Petra May, Joachim Herz, Hans H Bock
Cell Res. 2013 Apr; 23(4): 473–490. Published online 2013 Jan 15. doi: 10.1038/cr.2013.7
PMCID: PMC3616423

γ-Secretase Mediates Self-Limitation of the Inflammatory Response by Processing LRP1
Kai Zurhove, Chikako Nakajima, Joachim Herz, Hans H. Bock, Petra May
Sci Signal. Author manuscript; available in PMC 2009 Jun 10.Published in final edited form as: Sci Signal. 2008 Nov 25; 1(47): ra15. Published online 2008 Nov 25. doi: 10.1126/scisignal.1164263
PMCID: PMC2694618

Comparative phylogenomic analyses of teleost fish Hox gene clusters: lessons from the cichlid fish Astatotilapia burtoni
Simone Hoegg, Jeffrey L Boore, Jennifer V Kuehl, Axel Meyer
BMC Genomics. 2007; 8: 317. Published online 2007 Sep 10. doi: 10.1186/1471-2164-8-317
PMCID: PMC2080641