All in one Red MasterMix Fluoro (2x) mit Gelfärbefarbstoff und rotem Loading Dye.

Vorschau: 3-in-1 formula of the Red MasterMix Fluoro

Vorschau: RedMastermix (2x) Fluoro stability test at 4°C

Vorschau: Red MasterMix Fluoro (2x) mit Gelfärbefarbstoff

3-in-1 formula of the Red MasterMix Fluoro

RedMastermix (2x) Fluoro stability test at 4°C

Artikel-Nr.: M3236.0100

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ready-to-use PCR Mastermix mit rotem Loading Dye für die visuelle Kontrolle der... mehr

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Produktinformationen "Red MasterMix Fluoro (2x) mit Gelfärbefarbstoff"

ready-to-use PCR Mastermix mit rotem Loading Dye für die visuelle Kontrolle der Pipettierschritte und zusätzlichem Fluoreszenzfarbstoff zur schnellen und einfachen Detektion der DNA-Banden. Nach der PCR kann der PCR-Ansatz direkt, ohne Zugabe von Ladepuffer, in die Geltaschen pipettiert werden. Zusätzlich lässt sich schon direkt nach der PCR anhand einer Fluoreszenzkontrolle sofort ermitteln, ob und wie erfolgreich die Amplifikation war. Dadurch ist der Red MasterMix Fluoro (2x) mit Fluoreszenzfarbstoff noch zeit- und kostensparender als unser bewährter Red Mastermix. Der Red MasterMix Fluoro (2x) zeichnet sich zudem durch eine hohe Spezifität für beste Ergebnisse aus. Der Red MasterMix Fluoro (2x) ist eine fertige Mischung (ready-to-use) aus:

- Taq DNA Polymerase
- Reaktionspuffer
- dNTPs
- MgCl2
- rotem Loading Dye
- Fluoreszenzfarbstoff zur Detektion der PCR-Banden

in einer optimalen Konzentration für die effiziente Amplifikation von DNA Templates mittels PCR. Es müssen nur noch die Primer und die Template DNA dazu gegeben werden. Gleichzeitig enthält der PCR Matermix noch einen Zusatz und einen roten Farbstoff, der es ermöglicht, eine anschließende Elektrophorese ohne Zugabe von Ladepuffer zu fahren. Nach der Elektrophorese erfolgt die Detektion direkt unter Blaulicht, ohne weiteres Anfärben. Dies spart zusätzlich Zeit und Kosten. Der Red MasterMix Fluoro (2x) mit Fluoreszenzfarbstoff wurde für die Verwendung in der Routine PCR bis 4 kb Amplikonlänge entwickelt. Die spezielle Zusammensetzung des Puffers garantiert reproduzierbare Ergebnisse selbst nach wiederholten Auftau- und Einfrierzyklen. Unser Red MasterMix (2x) Fluoro wird in praktischen Aliquots von 1,25mL verschickt.

Einmaliges Testmuster zum Sonderpreis erhältlich! Keine Versandkosten bei Versand innerhalb Deutschlands! Der Testmusterpreis wird bei der ersten offiziellen Bestellung des Produkts zurückerstattet.

Unsere Agarosen > und DNA Marker > sind ideal für die nachfolgende Elektrophorese geeignet.

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Unser Kommentar zu "Red MasterMix Fluoro (2x) mit Gelfärbefarbstoff"

• Store at +15°C to +30°C up to 3 months. • Store at +2°C to +8°C up to 6 months. • Store at -20°C up to 2 years.

Specifications: 2-time ready-to-use master mix for PCR including a red dye for better... mehr

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Technische Daten:

Specifications:
2-time ready-to-use master mix for PCR including a red dye for better visualization of pipetting and as gel loading dye and a fluorescence dye for detection of DNA bands in an electrophoresis gel. dNTPs, buffer and DNA polymerase already included.
Buffer contains orange G & xylene cyanol FF as tracking dyes.
Buffer contains a fluorescent gel staining dye for visualization of DNA bands.

Convenient Aliquot size: 1.25mL.

This master mix is stable for up to 3 months if stored at +15°C to +30°C.
This master mix is stable for up to 6 months if stored at +2°C to +8°C.
This master mix is stable for up to 24 months if stored at -20°C.

Sicherheits Hinweise / Safety

Klassifizierungen / Classification

eclass-Nr: 34-16-04-90

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Hier finden Sie Informationen und weiterführende Literatur zu Red MasterMix Fluoro (2x) mit Gelfärbefarbstoff. Für weitere Dokumente (Zertifikate mit weiteren Lotnummern, Sicherheitsdatenblätter in anderer Sprache, weitere Produktinformationen) wenden Sie sich bitte an Genaxxon biosience unter: info@genaxxon.com oder Tel.: +49 731 3608 123.

Datenblätter

Red MasterMix (2x) Taq PCR MasterMix mit rotem...

ab 37,50 € * 62,50 € *

PCR-Mastermix (2X)

ab 55,00 € *

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Yes, the integrated fluorescent dye DNA loading buffer I Fluoro (6x) is a non-toxic nucleic acid dye. It can be easily disposed of with normal waste. Separate handling of the waste as with EtBr is therefore not necessary. If necessary, obtain information from your local waste disposal company.

Yes, you can use UV or blue light for detection of the signal. Therefore, you can replace, e.g., EtBr directly with the DNA loading buffer I Fluoro (6x) without having to change your existing imaging system.

If you want to benefit from all the advantages of the SimplyEnlight PCR products, you will also need to use a DNA ladder with fluorescent dye to avoid further staining of the gel. To make it as convenient as possible for you, you can use our GenLadder 100bp Plus with staining dye for this purpose. However, you can take our DNA Ladder 100bp (or any other) and add our DNA Loading Buffer I Fluoro (6X) in a 5:1 ratio before loading the gel.

Yes, you can use your own cycling conditions. Please note that the cycling conditions in our protocol are only guidelines for PCR amplification. Optimal reaction conditions such as incubation times, temperatures, and amount of template DNA may vary and must be determined individually. Besides this, optimization of the annealing temperature is important to guarantee an optimal amplification. We recommend performing a temperature gradient and using primers with a Tm >60°C (Tm = melting temperature of the primer, which is the temperature at which 50% of the primer bind to the complementary sequence of the target DNA.)

If DNA concentration is less than 4pg, it may cause a migratory shift when performing gel electrophoresis. To remedy this, we recommend removing the fluorescent dye prior to post-staining with our DNA Loading buffer I Fluoro (6x) again for restoring the DNA molecular weight in the original position. To remove the fluorescent dye, immerse the PCR product containing the fluorescent dye into 100mM NaCl and add 2.5 volumes of absolute or 95% ethanol. Incubate on ice for 20 min and centrifuge the mixture at 4°C for at least 10 minutes. Then remove the suspension of ethanol and wash the pellet with 1mL of 70% ethanol. Dry the residual ethanol and resuspend the dsDNA in the TE buffer.