5-TAMRA (5-Carboxytetramethylrhodamin) - reines Isomer

DAF-2 zeigt eine höhere Photostabilität als klassische Fluoresceinderivate. Anwendungen: DAF-2 ist ein hochempfindliches Nachweisreagenz von NO und der Bestimmung der NO-Synthaseaktivität. DAF-2 bleibt im wesentlichen nichtfluoreszierend solange es nicht mit dem Nitrosiumkation reagiert (NO+ entsteht bei der spontanen Oxidation aus NO) und dabei einen stark fluoreszierenden Heterozyklus bildet. Der Heterozyklus wiederum bleibt im Zellzytoplasma gefangen. Dieser empfindliche und spezifische Fluoreszentfarbstoff wurde schon dazu benutzt um individuelle NO-produzierende Neuronen in Hirnschnitten, bzw. um die NO-Produktion in Mitochondrien und in lebenden Pflanzenzellen nachzuweisen. In der Zelle reagiert das Produkt schnell mit NO in Gegenwart von O2 zur stark fluoreszierenden Verbindung Triazolfluorescein (DAF-2T (Cat-Nr. S5442 >)). Referenzen: (1) M. Kirsch et al.; J. Pineal Res. 40(1), 10 (2006), (2) V.M. Dirsch et al.; Biol. Proc. Online 5(1), 136 (2003), (3) N. Nagata et al.; J. Biochem. 125(4), 658 (1999), (4) H. Kojima et al.; Chem. Pharm. Bull. 46, 373 (1998), (5) H. Kojima et al.; Anal. Chem. 70, 2446 (1998)

Amine-reactive carboxytetramethylrhodamine dye marker for fluorescence labeling, especially for labeling of biomolecules (Abs: 554 nm, Em: 577 nm). This single isomer amine-reactive red fluorescent derivatization reagent may be used for covalent labeling of proteins and alkylamino modified nucleic acids. The fluorescence quantum yield of TAMRA conjugates is about one-fourth that of fluorescein conjugates. Nevertheless, TAMRA conjugates often appear brighter than the corresponding fluorescein conjugates due to the fact that TAMRA is readily excited by the 546 nm spectral line from mercury-arc lamps used in most fluorescence microscopes and is intrinsically more photostable than fluorescein. TAMRA is also efficiently excited by the 543 nm spectral line of the green He-Ne laser.

Reines 6-Isomer von Carboxytetramethylrhodamin (TMR). Das nichtaktivierte Carboxytetramethylrhodamin wird als roter Fluoreszenzfarbstoff für die Derivatisierung von Proteinen und alkylaminomodifizierter Nukleinsäuren benutzt sowie zur Markierung von Oligonukleotiden verwendet. Die Fluoreszenzausbeute von TAMRA ist ca. ein Viertel von Fluoresceinkonjugaten. Trotzdem erscheinen TAMRA-Konjugate heller als die korrespondierenden Fluorescein-Derivate aufgrund der Tatsache, dass TAMRA leicht durch die 546nm Spektrallinie von Quecksilberdampflampen angeregt wird. Gleichzeitig ist es an sich deutlich photostabiler als Fluorescein. Der Fluoreszenzfarbstoff wird auch sehr effektiv durch die 543nm Spektrallinie von grünem Ne-Laser angeregt. Succinimidylester von 5-TAMRA >, 6-TAMRA > oder der gemischten 5/6-TAMRA Isomere > sind die Markierungsreagenzien der Wahl zur Herstellung von fluoreszierenden Biokonjugaten, einschließlich Peptid-, Protein-, Nukleotid- und Nukleinsäurekonjugaten, insbesondere für in der Immunchemie verwendete fluoreszierende Antikörper und Avidinderivate. Diese Fluoreszenzfarbstoffe finden auch Verwendung als Akzeptoren für FAM-Fluorophore > in FRET-Studien.Weitere Fluoreszenzfarbstoffe von Genaxxon: 5/6-TAMRA >, 5-TAMRA >, FAM >, ROX >, DAF-2 >.

5/6-Carboxy-4',5'-dichloro-2',7'-dimethoxyfluorescein und weitere Fluoreszenzfarbstoffe. Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum von Fluoreszenzfarbstoffen für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Dieses nichtaktivierte Fluoresceinderivat wird als orange fluoreszierender Farbstoff für die Derivatisierung von Proteinen und Alkylaminomodifizierten Nukleinsäuren benutzt. Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum an Fluoreszenzfarbstoffen > für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Andere Fluoreszenzfarbstoffe > von Genaxxon: S5409 FAM >, S5410 5/6-TAMRA >, S5439 DAF-2 >, etc. Reference: P.J. Finn et al.; Nucleic Acids Res. 30, 2877 (2002), (2) J.M. Bartlett et al.; Mol Biotechnol 13, 185 (1999), (3) S.C. Hung et al.; Anal Biochem 255, 32 (1998).

5/6-Carboxytetramethylrhodaminsuccinimidylester (5(6) TAMRA-SE) ist ein aminreaktiver Rhodaminfarbstoffmarker zur Fluoreszenzmarkierung, insbesondere zur Markierung von Biomolekülen (Abs: 554 nm, Em: 577 nm). Dieses aminreaktive rot fluoreszierende Derivatisierungsreagenz wird weitverbreitet zur kovalenten Markierung von Proteinen und alkylamino-modifizierten Nukleinsäuren verwendet. Die Fluoreszenzquantenausbeute von TAMRA-Konjugaten beträgt etwa ein Viertel derjenigen von Fluorescein-Konjugaten. Trotzdem erscheinen TAMRA-Konjugate oft heller als die entsprechenden Fluorescein-Konjugate, da TAMRA durch die 546-nm-Spektrallinie von in den meisten Fluoreszenzmikroskopen verwendeten Quecksilberbogenlampen leicht angeregt wird und photostabiler als Fluorescein ist. TAMRA wird auch durch die 543-nm-Spektrallinie des grünen He-Ne-Lasers effizient angeregt.

Amine-reactive carboxytetramethylrhodamine dye marker for fluorescence labeling, especially for labeling of biomolecules (Abs: 554 nm, Em: 577 nm). This single isomer amine-reactive red fluorescent derivatization reagent may be used for covalent labeling of proteins and alkylamino modified nucleic acids. The fluorescence quantum yield of TAMRA conjugates is about one-fourth that of fluorescein conjugates. Nevertheless, TAMRA conjugates often appear brighter than the corresponding fluorescein conjugates due to the fact that TAMRA is readily excited by the 546 nm spectral line from mercury-arc lamps used in most fluorescence microscopes and is intrinsically more photostable than fluorescein. TAMRA is also efficiently excited by the 543 nm spectral line of the green He-Ne laser.

5/6-TAMRA ist das Isomerengemisch von Carboxytetramethylrhodamin (TMR). Das nichtaktivierte Carboxytetramethylrhodamin wird als roter Fluoreszenzfarbstoff für die Derivatisierung von Proteinen und alkylaminomodifizierten Nukleinsäuren sowie zur Markierung von Oligonukleotiden verwendet. Die Fluoreszenzausbeute von TAMRA beträgt ca. ein Viertel von Fluoresceinkonjugaten. Trotzdem erscheinen TAMRA-Konjugate heller als die korrespondierenden Fluorescein-Derivate aufgrund der Tatsache, dass TAMRA leicht durch die 546nm Spektrallinie von Quecksilberdampflampen angeregt wird. Gleichzeitig ist es an sich deutlich photostabiler als Fluorescein. Der Fluoreszenzfarbstoff wird auch sehr effektiv durch die 543nm Spektrallinie von grünem Ne-Laser angeregt. Succinimidylester von 5-TAMRA >, 6-TAMRA > oder der gemischten 5/6-TAMRA Isomere > sind die Markierungsreagenzien der Wahl zur Herstellung von fluoreszierenden Biokonjugaten, einschließlich Peptid-, Protein-, Nukleotid- und Nukleinsäurekonjugaten, insbesondere für in der Immunchemie verwendete fluoreszierende Antikörper und Avidinderivate. Diese Fluoreszenzfarbstoffe finden auch Verwendung als Akzeptoren für FAM-Fluorophore > in FRET-Studien.Weitere Fluoreszenzfarbstoffe von Genaxxon: 5/6-TAMRA >, 5-TAMRA >, FAM >, ROX >, DAF-2 >.

5-ROX (5-Carboxy-X-rhodamin) gehört zu den Rhodaminfarbstoffen. Rhodaminfarbstoffe sind im Gegensatz zu Fluoresceinen über einen größeren pH-Bereich stabil und stabiler gegenüber Photobleaching. Das relativ langwellige Emissionsmaximum macht ROX zu einem attraktiven Farbstoff für Multiplex-Detektionssysteme. Derivate von ROX finden Anwendung in der Markierung von Peptiden, Proteinen und anderen biologischen Liganden. 5-ROX >, 6-ROX > und deren Mischung 5/6-ROX > werden verwendet bei der Markierung von Biomolekülen durch EDC-vermittelte Reaktionen. Succinimidylester mit dem Derivat 5/6-Carboxy-X-rhodamin (S5421 5(6) Carboxy-X-rhodaminsuccinimidylester / 5(6) ROX SE >) werden häufig verwendet für die Oligonukleotid-Markierung und für automatisierte Anwendungen in der DNA-Sequenzierung.Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum an Fluoreszenzfarbstoffen > für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Andere Fluoreszenzfarbstoffe > von Genaxxon: S5409 FAM >, S5410 5/6-TAMRA >, S5439 DAF-2 >, etc. Reference: P.J. Finn et al.; Nucleic Acids Res. 30, 2877 (2002), (2) J.M. Bartlett et al.; Mol Biotechnol 13, 185 (1999), (3) S.C. Hung et al.; Anal Biochem 255, 32 (1998).