5/6-TAMRA (5/6-Carboxytetramethylrhodamin) - Isomerengemisch

Reines 6-Isomer von Carboxytetramethylrhodamin (TMR). Das nichtaktivierte Carboxytetramethylrhodamin wird als roter Fluoreszenzfarbstoff für die Derivatisierung von Proteinen und alkylaminomodifizierter Nukleinsäuren benutzt sowie zur Markierung von Oligonukleotiden verwendet. Die Fluoreszenzausbeute von TAMRA ist ca. ein Viertel von Fluoresceinkonjugaten. Trotzdem erscheinen TAMRA-Konjugate heller als die korrespondierenden Fluorescein-Derivate aufgrund der Tatsache, dass TAMRA leicht durch die 546nm Spektrallinie von Quecksilberdampflampen angeregt wird. Gleichzeitig ist es an sich deutlich photostabiler als Fluorescein. Der Fluoreszenzfarbstoff wird auch sehr effektiv durch die 543nm Spektrallinie von grünem Ne-Laser angeregt. Succinimidylester von 5-TAMRA >, 6-TAMRA > oder der gemischten 5/6-TAMRA Isomere > sind die Markierungsreagenzien der Wahl zur Herstellung von fluoreszierenden Biokonjugaten, einschließlich Peptid-, Protein-, Nukleotid- und Nukleinsäurekonjugaten, insbesondere für in der Immunchemie verwendete fluoreszierende Antikörper und Avidinderivate. Diese Fluoreszenzfarbstoffe finden auch Verwendung als Akzeptoren für FAM-Fluorophore > in FRET-Studien.Weitere Fluoreszenzfarbstoffe von Genaxxon: 5/6-TAMRA >, 5-TAMRA >, FAM >, ROX >, DAF-2 >.

5/6-ROX (5/6-Carboxy-X-rhodamin) gehört zu den Rhodaminfarbstoffen. Rhodaminfarbstoffe sind im Gegensatz zu Fluoresceinen über einen größeren pH-Bereich stabil und stabiler gegenüber Photobleaching. Das relativ langwellige Emissionsmaximum macht ROX zu einem attraktiven Farbstoff für Multiplex-Detektionssysteme. Derivate von ROX finden Anwendung in der Markierung von Peptiden, Proteinen und anderen biologischen Liganden. 5-ROX >, 6-ROX > und deren Mischung 5/6-ROX > werden verwendet bei der Markierung von Biomolekülen durch EDC-vermittelte Reaktionen. Succinimidylester mit dem Derivat 5/6-Carboxy-X-rhodamin (S5421 5(6) Carboxy-X-rhodaminsuccinimidylester / 5(6) ROX SE >) werden häufig verwendet für die Oligonukleotid-Markierung und für automatisierte Anwendungen in der DNA-Sequenzierung.Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum an Fluoreszenzfarbstoffen > für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Andere Fluoreszenzfarbstoffe > von Genaxxon: S5409 FAM >, S5410 5/6-TAMRA >, S5439 DAF-2 >, etc. Reference: P.J. Finn et al.; Nucleic Acids Res. 30, 2877 (2002), (2) J.M. Bartlett et al.; Mol Biotechnol 13, 185 (1999), (3) S.C. Hung et al.; Anal Biochem 255, 32 (1998).

5/6-Carboxy-4',5'-dichloro-2',7'-dimethoxyfluorescein und weitere Fluoreszenzfarbstoffe. Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum von Fluoreszenzfarbstoffen für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Dieses nichtaktivierte Fluoresceinderivat wird als orange fluoreszierender Farbstoff für die Derivatisierung von Proteinen und Alkylaminomodifizierten Nukleinsäuren benutzt. Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum an Fluoreszenzfarbstoffen > für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Andere Fluoreszenzfarbstoffe > von Genaxxon: S5409 FAM >, S5410 5/6-TAMRA >, S5439 DAF-2 >, etc. Reference: P.J. Finn et al.; Nucleic Acids Res. 30, 2877 (2002), (2) J.M. Bartlett et al.; Mol Biotechnol 13, 185 (1999), (3) S.C. Hung et al.; Anal Biochem 255, 32 (1998).

5/6-Carboxytetramethylrhodaminsuccinimidylester (5(6) TAMRA-SE) ist ein aminreaktiver Rhodaminfarbstoffmarker zur Fluoreszenzmarkierung, insbesondere zur Markierung von Biomolekülen (Abs: 554 nm, Em: 577 nm). Dieses aminreaktive rot fluoreszierende Derivatisierungsreagenz wird weitverbreitet zur kovalenten Markierung von Proteinen und alkylamino-modifizierten Nukleinsäuren verwendet. Die Fluoreszenzquantenausbeute von TAMRA-Konjugaten beträgt etwa ein Viertel derjenigen von Fluorescein-Konjugaten. Trotzdem erscheinen TAMRA-Konjugate oft heller als die entsprechenden Fluorescein-Konjugate, da TAMRA durch die 546-nm-Spektrallinie von in den meisten Fluoreszenzmikroskopen verwendeten Quecksilberbogenlampen leicht angeregt wird und photostabiler als Fluorescein ist. TAMRA wird auch durch die 543-nm-Spektrallinie des grünen He-Ne-Lasers effizient angeregt.

5-TAMRA ist das reine 5-Isomer von Carboxytetramethylrhodamin (TMR). Das nichtaktivierte Carboxytetramethylrhodamin wird als roter Fluoreszenzfarbstoff für die Derivatisierung von Proteinen und alkylaminomodifizierter Nukleinsäuren benutzt sowie zur Markierung von Oligonukleotiden verwendet. Die Fluoreszenzausbeute von TAMRA ist ca. ein Viertel von Fluoresceinkonjugaten. Trotzdem erscheinen TAMRA-Konjugate heller als die korrespondierenden Fluorescein-Derivate aufgrund der Tatsache, dass TAMRA leicht durch die 546nm Spektrallinie von Quecksilberdampflampen angeregt wird. Gleichzeitig ist es an sich deutlich photostabiler als Fluorescein. Der Fluoreszenzfarbstoff wird auch sehr effektiv durch die 543nm Spektrallinie von grünem Ne-Laser angeregt. Succinimidylester von 5-TAMRA >, 6-TAMRA > oder der gemischten 5/6-TAMRA Isomere > sind die Markierungsreagenzien der Wahl zur Herstellung von fluoreszierenden Biokonjugaten, einschließlich Peptid-, Protein-, Nukleotid- und Nukleinsäurekonjugaten, insbesondere für in der Immunchemie verwendete fluoreszierende Antikörper und Avidinderivate. Diese Fluoreszenzfarbstoffe finden auch Verwendung als Akzeptoren für FAM-Fluorophore > in FRET-Studien.Weitere Fluoreszenzfarbstoffe von Genaxxon: 5/6-TAMRA >, 5-TAMRA >, FAM >, ROX >, DAF-2 >.

Das Isomerengemisch 5/6-FAM (5/6-Carboxyfluorescein) ist ein aminreaktives Derivat von Fluorescein >, das stabile Biopolymer-Fluoresceinderivate ergibt. Die reinen Fluoresceinderivate 5-FAM > und 6-FAM > und das Isomerengemisch 5/6-FAM > sind die gebräuchlichsten fluoreszierenden Derivatisierungsreagentien zur kovalenten Markierung von Proteinen. Carboxyfluorescein wird von den Zellen besser zurückbehalten als Fluorescein, da sein pKa niedriger ist als der cytosolische pH-Wert der meisten Zellen. 6-FAM enthält eine Carbonsäure, die mit primären Aminen über Carbodiimid-Aktivierung reagieren kann. Carboxyfluorescein wird üblicherweise als polarer Tracer verwendet. Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum an Fluoreszenzfarbstoffen > für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Andere Fluoreszenzfarbstoffe > von Genaxxon: S5416 5-ROX >, S5410 5/6-TAMRA >, S5439 DAF-2 >, etc.

5-ROX (5-Carboxy-X-rhodamin) gehört zu den Rhodaminfarbstoffen. Rhodaminfarbstoffe sind im Gegensatz zu Fluoresceinen über einen größeren pH-Bereich stabil und stabiler gegenüber Photobleaching. Das relativ langwellige Emissionsmaximum macht ROX zu einem attraktiven Farbstoff für Multiplex-Detektionssysteme. Derivate von ROX finden Anwendung in der Markierung von Peptiden, Proteinen und anderen biologischen Liganden. 5-ROX >, 6-ROX > und deren Mischung 5/6-ROX > werden verwendet bei der Markierung von Biomolekülen durch EDC-vermittelte Reaktionen. Succinimidylester mit dem Derivat 5/6-Carboxy-X-rhodamin (S5421 5(6) Carboxy-X-rhodaminsuccinimidylester / 5(6) ROX SE >) werden häufig verwendet für die Oligonukleotid-Markierung und für automatisierte Anwendungen in der DNA-Sequenzierung.Genaxxon bioscience bietet ein großes Spektrum an Fluoreszenzfarbstoffen > für die Gestaltung Ihrer Sonde oder für andere Forschungszwecke. Andere Fluoreszenzfarbstoffe > von Genaxxon: S5409 FAM >, S5410 5/6-TAMRA >, S5439 DAF-2 >, etc. Reference: P.J. Finn et al.; Nucleic Acids Res. 30, 2877 (2002), (2) J.M. Bartlett et al.; Mol Biotechnol 13, 185 (1999), (3) S.C. Hung et al.; Anal Biochem 255, 32 (1998).

4,5-Diaminofluoresceindiacetat (DAF-2 DA) ist ein hochsensitives zellpermeables Nachweisreagenz für die Echtzeitmessung von NO in lebenden Zellen. Anwendungen: DAF-2DA ist wahrscheinlich der erfolgreichste Indikator für NO. Wie andere Fluoresceindiazetate ist DAF-2 Diazetat membrangängig und wird durch intrazelluläre Esterasen zu 4,5-Diaminofluorescein (DAF-2) deacetyliert. DAF-2 DA kann für die fluorometrische Detektion und die Fluoreszenzmikroskopie von NO benutzt werden um Echtzeitänderungen im NO-Gehalt in vivo zu messen. Referenzen: (1) V.M. Dirsch et al.; Biol. Proc. Online 5(1), 136 (2003), (2) N. Nagata et al.; J. Biochem. 125(4), 658 (1999), (3) H. Kojima et al.; Anal. Chem. 70(13), 2446 (1998), (4) H. Kojima et al.; Chem. Pharm. Bull. 46, 373 (1998), (5) H. Kojima et al.; Neuroreport 9, 3345 (1998).